巴氏染色
巴氏染色的操作方法及注意事項(xiàng)
染色有4個(gè)步驟：1、固定；2、核染色；3、胞漿染色；4、透明。
　　主要達(dá)到以下要求：1、核的結(jié)構(gòu)清晰；2、透明度高；3、分色恰當(dāng)。
一、巴氏染色固定
　　固定的目的細(xì)胞制片的迅速固定是制片過(guò)程中關(guān)鍵的一步，否則會(huì)影響細(xì)胞學(xué)診斷的準(zhǔn)確性。對(duì)于不同的標(biāo)本需要不同的固定方法。zui為常用的固定方法是95%酒精作為固定液的濕固定法。酒精作為一種脫水劑能夠防止細(xì)胞內(nèi)的酶捋蛋白質(zhì)分解而自容，并凝固細(xì)胞內(nèi)的物質(zhì)如蛋白質(zhì)、脂肪和糖類(lèi)等，使其保持與組織生活相仿的成分，從而使細(xì)胞各部分，尤其核染色質(zhì)易于著色。對(duì)于巴氏染色來(lái)說(shuō)，酒精固定zui為重要的。如果酒精濃度不足引起的固定不佳，可造成細(xì)胞的人為變化，并可導(dǎo)致假陽(yáng)性或假陰性的診斷。
　　1、固定方法濕固定法：作為用95%酒精固定液固定的細(xì)胞學(xué)標(biāo)本一定使用濕固定法。制片制備完后，趁標(biāo)本新鮮而又濕潤(rùn)時(shí)，立即放入盛有95%酒精的固定缸內(nèi)。制片在固定液內(nèi)至少保持15-30min。固定時(shí)間通常不超過(guò)1周。這種制片染色后，顏色鮮艷，結(jié)構(gòu)清晰。如果細(xì)胞制片需要送至另一實(shí)驗(yàn)室或郵寄他處染色時(shí)，可以固定15min后，把制片取出后立即密封的容器中或者使用甘油防止制片干燥。因?yàn)闊o(wú)論固定前或固定后的制片，如果發(fā)生干燥后都會(huì)影響染色的效果。
　　2、固定注意事項(xiàng)固定液的過(guò)濾：為了防止細(xì)胞污染，凡是使用過(guò)的固定液，必須過(guò)濾后才能再使用。使用過(guò)長(zhǎng)的固定液，必須用酒精相對(duì)密度計(jì)測(cè)定，酒精濃度低于90%時(shí)應(yīng)該及時(shí)更換新液。濕固定的重要性：標(biāo)本再新鮮時(shí)及時(shí)固定時(shí)保證染色效果的重要因素。如蘇木素對(duì)細(xì)胞核的染色，巴氏染色中胞漿的特殊著色作用，均可因標(biāo)本干燥后固定而大受影響。制片標(biāo)本的郵寄：標(biāo)本再固定15min后取出，立即加甘油數(shù)滴于制片上，裝入密封的小盒中。實(shí)驗(yàn)室在收到標(biāo)本后，先浸入95%酒精中，使甘油溶去，再進(jìn)行染色。
二、巴氏染色核染色
　　1、 蘇木素液浸染時(shí)間一般在3-5min，但是必須隨氣溫和染料情況而酌情改變。夏季或放置較久的蘇木素染液容易著色，時(shí)間要縮短；冬季或新配制的蘇木素染液和應(yīng)用已久較稀釋的蘇木素液不易著色，時(shí)間要延長(zhǎng)。在使用蘇木素染色時(shí)，一般有2種方法：
　　1）過(guò)染法：首先有意識(shí)地進(jìn)行深染，然后通過(guò)鹽酸酸化過(guò)程使核染色趨于合適。這種方法能夠在酸化過(guò)程中把胞漿內(nèi)黏附多余的蘇木素染料去掉，使胞漿染色更為鮮艷、清晰、多用于黏液多的標(biāo)本。
　　2）淡染法：在核染色過(guò)程中，嚴(yán)格掌握染色時(shí)間，使核染色適宜而不用鹽酸酸化，但是胞漿中少量的蘇木素會(huì)影響EA染色的質(zhì)量。主要用于黏液少的標(biāo)本，避免在酸化和自 來(lái)水沖洗的過(guò)程中使細(xì)胞成片地脫落。在使用蘇木素染色時(shí)，一定要每日進(jìn)行過(guò)濾，否則蘇木素結(jié)晶會(huì)影響染色的質(zhì)量。一般蘇木素染液可以使用較長(zhǎng)時(shí)間，所以每日增加少量新鮮染液即可。
　　2、堿化堿化亦稱(chēng)返藍(lán)過(guò)程，可以使用飽和碳酸鋰或3%氨水堿化，目的使蘇木素及早顯色，時(shí)間約數(shù)秒。更重要的是流水沖洗，可使藍(lán)色顯的更鮮艷。堿性溶液亦需要充分漂清才不會(huì)妨礙下一步的胞漿著色及標(biāo)本制成后的顏色保存。分化和堿化溶液至少每天更換新液。
三、巴氏染色胞漿染色
　　胞漿染色在巴氏方法中亦稱(chēng)為OG—EA染色，它包括橘黃G（OG）和EA兩部分染色。由于橘黃G是一種小分子染料，能夠很快地作用于胞漿，一般染色時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng)，通常1-2min。對(duì)于宮頸、陰道上皮中非正常角化細(xì)胞和角化型鱗癌細(xì)胞的胞漿中都可以出現(xiàn)鮮艷的橘黃色。
四、封固制片
　　封固制片對(duì)于避免空氣干燥的影響，制片經(jīng)長(zhǎng)期存放不褪色是非常重要的。一般使用24mm×50mm或24mm×60mm的蓋玻片，用二甲苯調(diào)配的中性樹(shù)膠進(jìn)行封固。
五、透明
　　染色的zui后一步是透明，使細(xì)胞的色度與細(xì)胞的重疊不致影響鏡下檢查。這是在脫水與制片封固之間的一項(xiàng)重要步驟。zui常用的透明溶劑使二甲苯，二甲苯的折射率在1.494，載玻片的折射率在1.515，兩者較為匹配。如果二甲苯溶液出現(xiàn)顏色或變得渾濁，一定要更換新液。 巴氏染色操作流程 95%乙醇固定（15min）→清水沖洗多次→蘇木素染液（3-5min）→清水沖洗三次→藍(lán)化→95%乙醇漂洗→橙黃染液（1-10s）→95%乙醇漂洗→95%乙醇漂洗→100%乙醇漂洗→EA50（3-5m）→95%乙醇漂洗→95%乙醇漂洗→無(wú)水乙醇漂洗→無(wú)水乙醇（2min）→二甲苯（2min）→中性樹(shù)膠封片
巴氏染色注意事項(xiàng)
1、細(xì)胞核著色不佳
　?。?）細(xì)胞核著色過(guò)淺：
　　1）鹽酸分化時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或蘇木素染液時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。需要縮短分化時(shí)間或延長(zhǎng)堿化時(shí)間；每日加入少量新鮮蘇木素染液或重新配制蘇木素液。
　　2）在固定之前制片干燥。所以對(duì)巴氏染色的制片需要嚴(yán)格遵守濕固定的原則。
　　3）自來(lái)水的PH值偏酸性。使用堿性溶液。
　?。?）細(xì)胞核著色過(guò)深：
　　1）鹽酸溶液濃度不夠。適當(dāng)加入幾滴鹽酸以增加濃度。
　　2）制片用高于95%以上濃度的酒精固定后可以出現(xiàn)染色過(guò)深。應(yīng)用95%酒精固定。
2、細(xì)胞漿著色不佳
　?。?）如果全片內(nèi)胞漿都淡染，則需要延長(zhǎng)染色時(shí)間或更換新液。
　　（2）如果胞漿不分色，均為淺紅色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌樣細(xì)菌影響胞漿染色。此情況可以適當(dāng)增加染色時(shí)間能夠部分糾正不分色狀況。
　?。?）胞漿染成灰色或紫色，是由于蘇木素染色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或鹽酸分化不佳。經(jīng)過(guò)褪色后重新蘇木素可以糾正。
　　（4）由于標(biāo)本的不同，同樣配方的EA染液可造成偏藍(lán)、偏綠和偏紅，對(duì)不同的標(biāo)本應(yīng)該使用不同的EA染液。一般認(rèn)為，EA36和EA50用于婦科標(biāo)本，而EA65或改良EA用于非婦科標(biāo)本。
　　（5）胞漿不分色的另一重要原因是由于EA染液的PH值不恰當(dāng)所致。如染色為紅色，可以加少許磷鎢酸溶液糾正；如染色均為藍(lán)色或綠色，可以加少許飽和碳酸鋰溶液糾正。對(duì)于改良EA染液，每100ml染液加入2ml冰醋酸后染色效果更佳；染液使用更持久。